Nuevos registros y actualización de la lista faunística de los pulgones (Hemiptera: Aphididae) de la Argentina
New records and actualized check list of aphids (Hemiptera: Aphididae) from Argentina
Ortego, Jaime*, María E. Difabio** y M. Pilar Mier Durante***
* INTA EEA Junín. CC Nro. 78; 5570 San Martín, Mendoza, Argentina; e-mail: jortego@junin.inta.gov.ar
** ISCAMEN; Boulogne Sur Mer 3050; 5500 Mendoza, Argentina; e-mail: marydifabio@yahoo.com.ar
*** Departamento de Biología Animal, Universidad de León, 24071 León, España; e-mail: dbammd@unileon.es
RESUMEN. Se citan por primera vez para la Argentina cinco especies de pulgones: Hyalopteroides humilis (Walker), Melanaphis donacis (Passerini), Illinoia azaleae (Mason), Myzus hemerocallis Takahashi y Rhopalosiphoninus staphylleae (Koch). Las dos primeras son también nuevas para América del Sur. Se presenta una lista actualizada de áfidos, con comentarios sobre varias especies. Se citan por primera vez para Chile tres especies: Capitophorus hippophaes (Walker), M. donacis y Takecallis arundinariae (Essig).
PALABRAS CLAVE. Afidos. Nuevos registros. Argentina. Chile. Lista faunística.
ABSTRACT. The aphid species Hyalopteroides humilis (Walker), Melanaphis donacis (Passerini), Illinoia azaleae (Mason), Myzus hemerocallis Takahashi and Rhopalosiphoninus staphylleae (Koch) are been recorded for first time from Argentina. The first two of them are also new record from South America. The actualized Argentinean aphid check-list is presented, and comments about several species are given. Capitophorus hippophaes (Walker), M. donacis and Takecallis arundinariae (Essig) are recorded for first time from Chile.
KEY WORDS. Aphids. New records. Argentina. Chile. Check-list.
INTRODUCCIÓN
Hasta el final de 1992 se conocían en el territorio continental argentino 133 especies de pulgones (Hemiptera: Aphididae), la mayor parte de ellas (103) por introducción antrópica (Nieto Nafría et al., 1994); para esa fecha también se mencionan en las Islas Malvinas (Hille Ris Lambers, 1974 y Brown, 1987) dos especies nativas no registradas en el continente: Pentamyzus falklandicus Hille Ris Lambers y Pentamyzus tenuis Brown.
Con posterioridad a esa fecha diversos autores (Blackman & Eastop, 1994; Carvalho et al., 1998; Delfino, 1994, 2001, 2002; Delfino & Binazzi, 2000, 2002; Delfino et al., 2002; La Rossa et al., 1990, 1997; Mier Durante & Ortego, 1998, 1999a, 1999b; Mier Durante et al., 1997, 2003; Nieto Nafría & Ortego, 2002; Nieto Nafría et al., 1999, 2000, 2002, 2004, Ortego, 1994, 1998a, 1998b, 2000; Ortego & Difabio, 2002; Ortego & Mier Durante, 1997, 2003; Ortego et al., 1997, 1998, 2000, 2002; Pagnone et al., 1993; Remaudière, 1994; Remaudière & Halbert, 1996; Saini et al., 2002; y Szpeiner & Delfino, 2002) han efectuado adiciones y correcciones a la lista. Además en la mencionada recensión de Nieto Nafría et al., 1994 no se incluyeron las citas aportadas por Ortego, 1991. Varias de las especies incorporadas a la lista durante estos años se describieron a partir de material argentino, pero la mayor cantidad de ellas no son de origen sudamericano. Algunas de las especies introducidas son perjudiciales para determinados cultivos.
MATERIAL Y MÉTODOS
Desde 1996 los autores, junto con J. M. Nieto Nafría, vienen realizando relevamientos de pulgones sobre sus plantas huéspedes y con trampas Moericke (trampas amarillas de agua, TAA) en distintas zonas de la Argentina y en algunas de Chile, para acrecentar el conocimiento de sus respectivas afidofaunas. Los pulgones capturados se mantienen en etanol al 70% hasta su montaje entre porta y cubre para su identificación. El material estudiado se encuentra depositado en las colecciones de Jaime Ortego en la EEA INTA Junín (JOINTA) y en el Departamento de Biología Animal de la Universidad de León, España (DBAL).
RESULTADOS
El estudio de las muestras recolectadas en la Argentina y Chile nos permite citar por primera vez en la Argentina las cinco especies que se tratan detalladamente a continuación. Se mencionan por primera vez para Chile tres especies y se aporta más información sobre otras que se conocen en muy pocas localidades argentinas.
Nuevos registros
Hyalopteroides humilis (Walker)
Sinónimos más frecuentes: Hyalopteroides pallida Theobald; Hyalopterus dactylidis Hayhurst; Brachycolus slavae Mordvilko.
Material examinado: ARGENTINA. Mendoza: Malargüe, 9-III-1998, Ortego col., TAA, hembra vivípara alada. Neuquén: Chos Malal, 21-XII-1999, Ortego col., TAA, hembra vivípara alada (en JOINTA y DBAL).
Hyalopteroides humilis es la única especie del género Hyalopteroides Theobald (Remaudière & Remaudière, 1997). Es monoica holocíclica sobre gramíneas de poco porte. Se puede diferenciar de las otras especies de pulgones que viven sobre esas plantas en la Argentina por el cuerpo alargado, los cornículos cortos (su longitud es menor que la anchura basal de la cauda), la presencia de algunos sensorios secundarios en el III antenito y los tubérculos fronto-antenales muy bien marcados.
Distribución. Básicamente templado-holártica. Es la primera vez que se la cita en América del Sur.
Illinoia (Illinoia) azaleae (Mason)
Sinónimos más frecuentes: Amphorophora vaccinii Mason
Material examinado: ARGENTINA. Mendoza: Maipú, 7-VII-2002, Rhododendron sp. (azalea), Ortego col., hembras vivíparas ápteras y aladas (en JOINTA y DBAL).
Es un género complejo, con cuatro subgéneros y 41 especies, varias de ellas con subespecies (Remaudière & Remaudière, 1997). Illinoia azaleae es una especie monoica y de ordinario anholocíclica en Rhododendron spp. y en algunas otras ericáceas (Blackman & Eastop, 2000); puede causar daños a azaleas y rododendros cultivados, especialmente en los de interior, cuyas hojas y tallos jóvenes coloniza. Las hembras vivíparas ápteras presentan en vida color verde o verde grisáceo con los extremos distales de antenas y patas oscuros y los cornículos sombreados normalmente hacia la base. Esta especie se diferencia de otras cogenéricas por: antenas 1,1-1,4 veces el cuerpo, que mide aproximadamente 2 mm; filamento terminal 4,5-6,0 veces la base del antenito VI, 1-6 sensorios secundarios (alineados en el tercio proximal del III antenito) en las ápteras y 10-21 en las aladas; artejo apical del rostro 1,1-1,4 veces el segundo del tarso posterior y con 8-12 setas complementarias; fórmula tarsal 5.5.5; cornículos aproximadamente de 0,3 el cuerpo, 2,2-2,5 veces la cauda y con reticulación en el 6-12% apical; cauda con 7-9 setas.
De las tres subespecies que admiten Remaudière & Remaudière (1997), los ejemplares capturados pueden adscribirse a la subespecie nominotípica.
Distribución. Es originaria de América del Norte y ha sido introducida en Europa, Nueva Zelanda y Sudáfrica (Blackman & Eastop, 2000).
Melanaphis donacis (Passerini)
Sinónimo más frecuente: Hyalopterus insignis Theobald
Material examinado: ARGENTINA. Córdoba: Río Cuarto, 27-VI-2002, Arundo donax, Ortego col., hembras vivíparas ápteras y aladas. Mendoza: Luján de Cuyo, 29-IX-1998, A. donax, Ortego col., hembras vivíparas ápteras y aladas; Ciudad, 16-V-1999, A. donax, Ortego col., hembras vivíparas ápteras y aladas. San Juan: Barreal, 10-X-2002, Ortego y Difabio col., 18-XI-2002, Ortego, Mier Durante y Nieto Nafría col., A. donax, hembras vivíparas ápteras y aladas; Media Agua 11-X-2002, Ortego y Difabio col., Phragmites australis, hembras vivíparas ápteras y aladas. Santa Fe: Rafaela, 26-XII-2000, Bertolaccini col., P. australis hembras vivíparas ápteras. CHILE. Arica: Arica, 14-XII-2000, Ortego col., A. donax, hembras vivíparas ápteras y aladas; Rancagua, 16-XII-2003, Ortego col., A. donax, hembras vivíparas ápteras y aladas (en JOINTA y DBAL).
El género Melanaphis van der Goot está asociado a gramíneas (huésped único en las especies monoicas y secundario en las dioicas) y es de origen paleártico. Es relativamente complejo, incluye entre 20 y 30 especies pero M. donacis puede ser reconocida con facilidad, pues se trata de pulgones pulverulento-blanquecinos (tienen abundante secreción cérea) con una zona dorso-abdominal sin cera y oscura, que viven en las hojas de las cañas (Arundo spp. y Phragmites spp.) formando grupos compactos; desprovistos de la cera son de color oscuro, más o menos negro, pardo o violáceo. Se diferencia de Melanaphis sacchari (Zehntner) porque los ápteros presentan bandas esclerosadas transversales dorso-abdominales, que faltan en M. sacchari, y de Hyalopterus spp., que también forman grupos compactos con polvillo céreo blanquecino sobre esas plantas, porque los pulgones de estas especies son alargados y de colores verde, rosa o anaranjado. Básicamente es holocíclica sobre Arundo donax y Phragmites communis, pero puede mantenerse anholocíclicamente (Heie, 1986).
Distribución. Es conocida de varios países de Europa y del occidente de Asia y también de América del Norte. Se cita por vez primera de América del Sur, con las muestras reseñadas de Argentina y de Chile.
Myzus (Myzus) hemerocallis Takahashi
Material examinado: ARGENTINA. Mendoza: Maipú, 8-IX-2002, Hemerocallis sp., Ortego col., hembras vivíparas ápteras y aladas; San Rafael, 29-IX-2002, Hemerocallis sp., Difabio col., hembras vivíparas ápteras y aladas (en JOINTA y DBAL).
Al género Myzus Passerini pertenecen varias especies muy dañinas para diversos cultivos, entre otras Myzus persicae (Sulzer), Myzus ornatus Laing, Myzus ascalonicus Doncaster y Myzus cymbalariae Stroyan, todas ellas presentes en la Argentina.
Las hembras vivíparas ápteras de M. hemerocallis presentan en vida color verde manzana o verde amarillento, con cornículos y cauda un poco más claros que el cuerpo, con antenas claras en general y con los artejos V y VI oscuros, y tarsos oscuros; mientras que las aladas son de color verde amarillento, con la cabeza y el tórax más pigmentados y bandas dorso-abdominales tenues, a veces unidas entre sí, antenas oscuras los artejos I, II y base del III y cornículos pardo grisáceos oscureciéndose hacia el ápice, cauda clara con una ligera constricción media. En todo caso la cauda presenta una ligera constricción mediana y lleva un par de setas, y los cornículos son cilíndricos (aunque en algunos pueden estar un poco hinchados) y están imbricados. Las aladas llevan de tres a nueve sensorios secundarios en el antenito III.
Ataca la parte basal de Hemerocallis spp. y Agapanthus umbellatus, y a pesar de los daños que causa no se conoce con certeza su ciclo biológico.
Distribución. Parece ser originaria de Asia y en la actualidad tiene una distribución muy amplia; en América del Sur se conoce de Venezuela (Cermeli, 1990).
Rhopalosiphoninus (Myzosiphon)
staphyleae tulipaellus (Theobald)
Sinónimo más frecuente: Rhopalosiphoninus pseudorumicis Theobald
Material examinado: ARGENTINA. Santa Cruz: Gobernador Gregores, 24-I-1998, TAA, hembra vivípara alada. Mendoza: Malargüe, 4-X-1998, TAA, hembra vivípara alada. Neuquén: Ñorquinco (Chos Malal), 18-I-2000, TAA, hembra vivípara alada. Chubut: Puerto Madrin, 2-V-2000, en bulbos de Tulipa sp. llegados a Malargüe (Mendoza), hembras vivíparas ápteras y aladas (en JOINTA y DBAL).
El género Rhopalosiphoninus Baker, es un macrosifino de reconocimiento relativamente fácil: tubérculos fronto-antenales bien desarrollados y convergentes, cornículos grandes y muy hinchados con reticulación apical, cauda triangular y corta. Agrupa cuatro subgéneros y una veintena de especies (Remaudière & Remaudière, 1997). Las vivíparas de R. (M.) staphyleae (Koch) son relativamente grandes (1,5–2,5 mm) y piriformes, con cornículos muy hinchados a partir del final de su primer tercio, con una suave transición entre la parte basal delgada y la zona hinchada; en Rhopalosiphoninus latysiphon (Davidson) la transición es brusca, suavemente pigmentados y con algunas imperfectas líneas de celdillas en el ápice y por su cauda corta y triangular; las ápteras son de color verde oscuro, con algún esclerosamiento dorso-abdominal y con sensorios secundarios en el antenito III; las aladas son verdinegras con una placa discal abdominal poco extensa (no contacta con los escleritos marginales) y normalmente con tan sólo dos ramas en la vena medial de las alas anteriores (Heie, 1994). Algunos autores (por ejemplo Remaudière & Remaudière, 1997, Blackman & Eastop, 2000) consideran que la especie tiene dos subespecies: R. (M.) s. staphyleae y R. (M.) s. tulipaellus, mientras que otros (por ejemplo Heie, 1994) estiman que se trata de dos especies diferentes. Los ejemplares argentinos corresponden a la subespecie R. (M.) s. tulipaellus de acuerdo con los caracteres aportados por Heie (1994): vivíparas ápteras con bandas esclerosadas segmentarias dorso-abdominales, que llegan a formar una pequeña placa central, cauda con cinco o más setas y antenito III con uno a siete sensorios secundarios; vivíparas aladas con antenas de 1,2-1,3 veces el cuerpo y seis a 18 sensorios secundarios en el antenito III. R. (M.) s. tulipaellus se desarrolla habitualmente de forma anholocíclica en partes subterráneas de muchas plantas, entre ellas tulipanes, pudiendo mantenerse en bulbos y tubérculos almacenados. Sus machos son ápteros, mientras que los de la R. (M.) s. staphyleae son alados.
Distribución. Varios países de Europa y América del Norte, y se cita por primera vez en América del Sur, donde ya se conocía R. (M.) s. staphyleae del Perú, que además de Europa, se conoce también de Asia, América del Norte, África subsahariana y la región Australiana.
Lista actualizada de las especies de pulgones de la Argentina
Teniendo en cuenta la relación de especies publicada en el catálogo de Nieto Nafría et al., 1994, los aportes de Ortego, 1991 (no contenidos en el anterior), las adiciones y correcciones a la afidofauna continental argentina realizadas desde entonces y las cinco especies ahora mencionadas por primera vez, se han citado en la Argentina 201 especies; todas, excepto Pentamyzus falklandicus Hille Ris Lambers, se conocen de su territorio continental.
Se listan a continuación las 200 especies presentes en el territorio continental argentino ordenadas alfabéticamente en cada taxón supragenérico. En las especies subdivididas en subespecies según los criterios taxonómicos actuales, se han precisado las subespecies si ello ha sido posible. En todos los casos se siguen las clasificaciones general de Remaudière & Remaudière (1997), con las modificaciones nomenclaturales de Nieto Nafría et al., 1998, y particular de Calaphidinae de Quednau (1999).
Detrás del nombre de cada una de las especies que no figuraban en el mencionado catálogo, se señala entre corchetes la referencia de la primera cita para el territorio continental argentino, que se simplifica con la expresión “nueva” si la especie fue descrita a partir de material argentino después de 1994, o con la expresión “cita” si es una de las especies que se citan ahora por primera vez.
Anoeciinae
Anoecia (Anoecia) corni (Fabricius) ... [Ortego, 1998b]
Aphidinae Aphidini Aphidina
Andinaphis paradoxa (Mier Durante, Ortego & Nieto Nafría) ... [nueva] ... (nota 1)
Aphis (Aphis) acaenaevora Mier Durante & Ortego ... [nueva]
Aphis (Aphis) amaranthi Holman ... [Ortego, 1998b]
Aphis (Aphis) berberidorum Ortego & Mier Durante ... [nueva]
Aphis (Aphis) cinerea Nieto Nafría & Ortego ... [nueva]
Aphis (Aphis) coreopsidis (Thomas)
Aphis (Aphis) coridifoliae Mier Durante & Ortego ... [nueva]
Aphis (Aphis) craccivora Koch ... (nota 2)
A. (A.) c. craccivora Koch
Aphis (Aphis) cytisorum Hartig
Aphis (Aphis) danielae Remaudière ... [nueva] ... (nota 3)
Aphis (Aphis) fabae Scopoli ... (nota 4)
A. (A.) f. eryngii E. E. Blanchard ... (nota 5)
A. (A.) f. fabae Scopoli
A. (A.) f. solanella Theobald ... (nota 6)
Aphis (Aphis) farinosa Gmelin
Aphis (Aphis) gossypii Glover ... (nota 2)
A. (A.) gossypii gossypii Glover
Aphis (Aphis) hederae Kaltenbach
Aphis (Aphis) illinoisensis Shimer
Aphis (Aphis) intrusa Ortego ... [nueva]
Aphis (Aphis) malalhuina Mier Durante, Nieto Nafría & Ortego ... [nueva]
Aphis (Aphis) martinezi Nieto Nafría, Ortego & Mier Durante ... [nueva]
Aphis (Aphis) matilei Nieto Nafría, Mier Durante & Ortego ... [nueva]
Aphis (Aphis) melosae Mier Durante & Ortego ... [nueva]
Aphis (Aphis) mulini Hille Ris Lambers ... (nota 7)
Aphis (Aphis) mulinicola Hille Ris Lambers ... (nota 7)
Aphis (Aphis) nasturtii Kaltenbach
Aphis (Aphis) nerii Boyer de Fonscolombe
Aphis (Aphis) papillosa Mier Durante, Nieto Nafría & Ortego ... [nueva]
Aphis (Aphis) paravanoi Nieto Nafría, Ortego & Mier Durante ... [nueva]
Aphis (Aphis) patagonica E.E. Blanchard ... (nota 8)
Aphis (Aphis) pseudopulchella E.E. Blanchard
Aphis (Aphis) roberti Nieto Nafría, Ortego & Mier Durante ... [nueva]
Aphis (Aphis) ruborum (Börner) ... [Delfino, 2002]
Aphis (Aphis) sambuci Linnaeus
Aphis (Aphis) schinifoliae E.E. Blanchard
Aphis (Aphis) senecionicoides E.E. Blanchard ... (nota 9)
Aphis (Aphis) spiraecola Patch
Brachyunguis (Brachyunguis) bahamondesi Remaudière & Halbert ... [nueva]
Brachyunguis (Xerophilaphis) blanchardi Remaudière & Bahamondes
Pehuenchaphis agilissima Mier Durante, Nieto Nafría & Ortego ... [nueva]
Pehuenchaphis americana (Mier Durante & Ortego) ... [nueva] ... (nota 10)
Protaphis terricola (Rondani) ... [Ortego, 1998b] ... (nota 11)
Toxoptera aurantii (Boyer de Fonscolombe) ... (nota 2)
T. a. aurantii (Boyer de Fonscolombe)
Toxoptera citricida (Kirkaldy)
Aphidinae Aphidini Rhopalosiphina
Hyalopterus pruni (Geoffroy) ... [Ortego, 1998b]
Hysteroneura setariae (Thomas)
Melanaphis bambusae (Fullaway) ... [Ortego et al, 2002] ... (nota 12)
Melanaphis donacis (Passerini) ... [cita]
Melanaphis sacchari (Zehntner)
Rhopalosiphum maidis (Fitch)
Rhopalosiphum nymphaeae (Linnaeus)
Rhopalosiphum padi (Linnaeus)
Rhopalosiphum rufiabdominale (Sasaki)
Schizaphis (Schizaphis) graminum (Rondani)
Aphidinae Macrosiphini
Acyrthosiphon (Acyrthosiphon) kondoi Shinji
Acyrthosiphon (Acyrthosiphon) loti (Theobald) ... [Ortego & Mier Durante, 2003]
Acyrthosiphon (Acyrthosiphon) malvae (Mosley) ... (nota 2)
A. (A.) m. malvae (Mosley) ... (nota 13)
Acyrthosiphon (Acyrthosiphon) pisum (Harris) ... (nota 2)
A. (A.) p. pisum (Harris)
Aulacorthum (Aulacorthum) solani (Kaltenbach) ... (nota 2)
A. (A.) s. solani (Kaltenbach)
Aulacorthum (Aulacorthum) speyeri Börner ... [Ortego, 1998b]
Aulacorthum (Neomyzus) circumflexum (Buckton) ... (nota 2)
A. (N.) c. circumflexum (Buckton)
Blanchardaphis capitophoroides (E.E. Blanchard) ... (nota 14)
Blanchardaphis poikila (Ortego, Nieto Nafría & Mier Durante) ... [nueva] ... (nota 14)
Brachycaudus (Appelia) schwartzi (Börner)
Brachycaudus (Appelia) tragopogonis (Kaltenbach) ... (nota 2)
B. (A.) t. tragopogonis (Kaltenbach)
Brachycaudus (Brachycaudus) helichrysi (Kaltenbach)
Brachycaudus (Mordvilkomemor) rumexicolens (Patch) ... (nota 15)
Brachycaudus (Prunaphis) cardui (Linnaeus) ... [Ortego, 1998b] ... (nota 15)
B. (P.) c. cardui (Linnaeus)
Brachycaudus (Scrophulaphis) persicae (Passerini) ... (nota 15)
B. (S.) p. persicae (Passerini) ... (nota 15)
Brevicoryne brassicae (Linnaeus)
Capitophorus carduinus (Walker)
Capitophorus elaeagni (Del Guercio)
Capitophorus hippophaes (Walker) (nota 16)
Cavariella (Cavariella) aegopodii (Scopoli)
Cavariella (Cavariella) pastinacae (Linnaeus)
Chaetosiphon (Pentatrichopus) fragaefolii (T.D.A. Cockerell)
Chaetosiphon (Pentatrichopus) tetrarhodum (Walker)
Chaetosiphon (Pentatrichopus) thomasi Hille Ris Lambers ... [Ortego, 1991]
Coloradoa angelicae (Del Guercio) ... [Ortego, 1998b]
Coloradoa artemisiae (Del Guercio) ... [Ortego, 1998b]
Coloradoa rufomaculata (Wilson)
Coloradoa tanacetina (Walker) ... [Ortego, 1998b]
Cryptomyzus (Cryptomyzus) ballotae Hille Ris Lambers ... [Ortego, 1991]
Cryptomyzus (Cryptomyzus) korschelti Börner ... [Szpeiner & Delfino, 2002]
Cryptomyzus (Cryptomyzus) michelseni (Schouteden)
Diuraphis (Diuraphis) noxia (Kurdjumov) ... (nota 17)
Dysaphis (Dysaphis) apiifolia (Theobald)
Dysaphis (Dysaphis) emicis (Mimeur)
Dysaphis (Dysaphis) foeniculus (Theobald)
Dysaphis (Dysaphis) lappae (Koch)
Dysaphis (Dysaphis) lappae cynarae (Theobald) ... [Ortego, 1998b]
Dysaphis (Dysaphis) tulipae (Boyer de Fonscolombe)
Dysaphis (Pomaphis) aucupariae (Buckton) ... [Ortego, 1998b]
Dysaphis (Pomaphis) plantaginea (Passerini)
Elatobium abietinum (Walker)
Eucarazzia elegans (Ferrari) ... [Ortego, 1994]
Hyadaphis coriandri (B. Das) ... [Ortego, 1998b]
Hyadaphis foeniculi (Passerini)
Hyadaphis foeniculi foeniculi (Passerini)
Hyalopteroides humilis (Walker) ... [cita]
Hyperomyzus (Hyperomyzus) carduellinus (Theobald)
Hyperomyzus (Hyperomyzus) lactucae (Linnaeus)
Idiopterus nephrelepidis Davis
Illinoia (Illinoia) azaleae (Mason)
Illinoia (Illinoia) azaleae azaleae (Mason) ... [cita]
Jacksonia papillata Theobald
Lipaphis (Lipaphis) erysimi (Kaltenbach)
L. (L.) e. pseudobrassicae (Davis)
Macrosiphoniella (Macrosiphoniella) artemisiae (Boyer de Fonscolmbe)
Macrosiphoniella (Macrosiphoniella) sanborni (Gillette)
Macrosiphoniella (Macrosiphoniella) tanacetaria (Kaltenbach)
M. (M.) t. bonariensis E.E. Blanchard
Macrosiphum (Macrosiphum) euphorbiae (Thomas)
Macrosiphum (Macrosiphum) rosae (Linnaeus) ... (nota 2)
M. (M.) r. rosae (Linnaeus) ... (nota 2)
Metopolophium (Metopolophium) dirhodum (Walker)
Metopolophium (Metopolophium) festucae (Theobald) ... (nota 18)
M. (M.) f. cerealium Stroyan... [Ortego, 1998 b]
M. (M.) f. festucae (Theobald)
Microparsus (Picturaphis) brasiliensis (Moreira) ... (nota 19)
Microparsus (Picturaphis) venezuelensis (Cermeli & Smith) ... (notas 2 y 19)
M. (P.) v. venezuelensis (Cermeli & Smith) ... (notas 2 y 19)
Microparsus (Picturaphis) vignaphilus (E.E. Blanchard) ... (nota 19)
Muscaphis mexicana Remaudière & Muñoz Viveros
Myzaphis bucktoni Jacob ... [Ortego, 1998b]
Myzaphis rosarum (Kaltenbach)
Myzus (Myzus) hemerocallis Takahashi ... [cita]
Myzus (Myzus) ornatus Laing
Myzus (Nectarosiphon) ascalonicus Doncaster
Myzus (Nectarosiphon) persicae (Sulzer)
Myzus (Sciamyzus) cymbalariae Stroyan ... [Ortego, 1998b]
Nasonovia (Nasonovia) ribisnigri (Mosley)
Nearctaphis bakeri (Cowen ex Gillette & Palmer) ... [Ortego, 1998b]
Neotoxoptera violae (Pergande)
Nietonafriella euclypeata Ortego ... [nueva]
Ovatus (Ovatus) crataegarius (Walker)
Pentalonia nigronervosa Coquerel
Pentamyzus acaenae (Schouteden)
Pentamyzus fueguinus Nieto Nafría, Mier Durante & Ortego ... [nueva]
Pentamyzus tenuis Brown ... [Nieto Nafría et al., 2002]
Pleotrichophorus chrysanthemi (Theobald)
Pleotrichophorus glandulosus (Kaltenbach) ... [Ortego, 1991]
Rhodobium porosum (Sanderson)
Rhopalomyzus (Rhopalomyzus) poae (Gillette) ... [Ortego, 1998b]
Rhopalosiphoninus (Myzosiphon) staphyleae (Koch) ... [cita]
R. (M.) s. tulipaellus (Theobald) ... [cita]
Rhopalosiphoninus (Rhopalosiphoninus) latysiphon (Davidson)
Sitobion (Sitobion) avenae (Fabricius)
Sitobion (Sitobion) fragariae (Walker) ... [Ortego, 1998b]
Sitobion (Sitobion) salviae (Bartholomew)
Uroleucon (Lambersius) bereticum (E.E. Blanchard) ... (nota 20)
Uroleucon (Lambersius) erigeronense (Thomas)
Uroleucon (Lambersius) littorale (E.E. Blanchard)
Uroleucon (Lambersius) tessariae Delfino ... [nueva]
Uroleucon (Uroleucon) ambrosiae (Thomas)
U. (U.) a. lizerianum (E.E. Blanchard) ... (nota 21)
Uroleucon (Uroleucon) garnicai Delfino
Uroleucon (Uroleucon) gochnatiae Delfino ... [nueva]
Uroleucon (Uroleucon) macolai (E.E. Blanchard)
Uroleucon (Uroleucon) sonchi (Linnaeus)
Uroleucon (Uroleucon) tucumani (Essig)
Uroleucon (Uromelan) aeneum (Hille Ris Lambers) ... [Carvalho et al., 1998] [Ortego, 1998b]
Uroleucon (Uromelan) compositae (Theobald) ... (nota 22)
Wahlgreniella australis Delfino
Wahlgreniella nervata (Gillette)... (nota 23)
Calaphidinae Panaphidini Myzocallidina
Hoplocallis picta (Ferrari)
Myzocallis (Agrioaphis) castanicola Baker ... (nota 2)
M. (A.) c. castanicola Baker
Myzocallis (Myzocallis) coryli (Goeze)
Tuberculatus (Tuberculatus) querceus (Kaltenbach)
Tuberculatus (Tuberculoides) annulatus (Hartig)
Calaphidinae Panaphidini Panaphidina
Appendiseta robiniae (Gillette) ... [Pagnone et al.,1993]
Monellia caryella (Fitch) ... [Saini et al., 2002]
Takecallis arundinariae (Essig) ... [Delfino, 2001] ... (nota 24)
Takecallis taiwana (Takahashi) ... [Delfino, 2001] ... (nota 25)
Therioaphis (Pterocallidium) trifolii (Monell) ... (nota 26)
Therioaphis (Rhizoberlesia) riehmi (Börner) ... [Ortego, 2000] ... (nota 26)
Tinocallis (Sappocallis) saltans (Nevsky) ... [La Rossa et al., 1990] ... (nota 26)
Tinocallis (Sarucallis) kahawaluokalani (Kirkaldy ... [La Rossa et al.,1997] ... (nota 26)
Chaitophorinae Chaitophorini
Chaitophorus leucomelas Koch ... [Ortego et al. 2000] ... (nota 27)
Chaitophorinae Siphini
Sipha (Rungsia) maydis Passerini ... [Delfino, 2002; Ortego & Difabio, 2002]
Sipha (Sipha) flava (Forbes)
Eriosomatinae Eriosomatini
Eriosoma lanigerum (Hausmann)
Eriosoma lanuginosum (Hartig)
Kaltenbachiella pallida (Haliday)
Tetraneura (Tetraneurella) nigriabdominalis (Sasaki)
Eriosomatinae Fordini
Aploneura lentisci (Passerini)
Asiphonella dactylonii Theobald
Geoica lucifuga (Zehntner)
Smynthurodes betae Westwood
Eriosomatinae Pemphigini
Pemphigus (Pemphigus) bursarius (Linnaeus)
Pemphigus (Pemphigus) populitransversus Riley ... (nota 28)
Lachninae Eulachnini
Cinara (Cinara) acutirostris Hille Ris Lambers ... [Delfino & Binazzi, 2000, 2002]
Cinara (Cinara) cedri Mimeur
Cinara (Cinara) confinis (Koch) ... (nota 29)
Cinara (Cinara) costata (Zetterstedt) ... [Ortego, 2000]
Cinara (Cinara) maghrebica Mimeur, 1934
Cinara (Cinara) piceae (Panzer) ... [Delfino & Binazzi, 2002] (nota 29)
Cinara (Cinara) pilicornis (Hartig)
Cinara (Cinara) pinimaritimae (Dufour) ... (nota 30)
Cinara (Cinara) pinivora (Wilson) ... [Delfino & Binazzi, 2000, 2002]
Cinara (Cupressobium) fresai E.E. Blanchard
Cinara (Cupressobium) juniperi (De Geer) ... [Delfino & Binazzi, 2000, 2002]
Cinara (Cupressobium) tujafilina (Del Guercio)
Eulachnus rileyi (Williams)
Eulachnus tauricus Bozhko ... [Delfino & Binazzi, 2000, 2002]
Lachninae Lachnini
Tuberolachnus (Tuberolachnus) salignus (Gmelin)
Lizeriinae
Lizerius (Lizerius) ocoteae E.E. Blanchard
Lizerius (Lizerius) tuberculatus (E.E. Blanchard)
Phloeomyzinae
Phloeomyzus passerinii (Signoret)
Pterocommatinae
Pterocomma populeum (Kaltenbach)
Spicaphidinae
Neuquenaphis (Neuquenaphis) edwardsi (Laing)
Neuquenaphis (Neuquenaphis) palliceps Hille Ris Lambers
Neuquenaphis (Neuquenaphis) similis Hille Ris Lambers ... [Nieto Nafría et al., 2004 ]
Notas a la lista actualizada
1. Andinaphis paradoxa fue descrita originalmente en el género Brachyunguis B. Das dentro del subgénero Andinaphis ; luego Kadyrbekov, 2001 elevó dicho subgénero a género.
2. Está admitido por Remaudière & Remaudière, 1997, que esta especie tiene subespecies; teniendo en cuenta los datos morfológicos, bionómicos y/o de distribución aportados por los autores de cada cita, podemos considerar que solamente la subespecie que se menciona es la conocida en la Argentina.
3. Nieto Nafría et al., 1994 citaron Aphis cytisorum sobre Lycium nodosum para la provincia de Córdoba, por una identificación errónea de ejemplares de A. danielae.
4. Como implícitamente indicaron Nieto Nafría et al., 1994, en la Argentina se han citado tres subespecies de la muy variable Aphis fabae, aunque muchas de las citas no se pueden adjudicar con certeza a ninguna de ellas.
5. Aphis fabae eryngii fue descrita para la Argentina (Blanchard, 1923) pero posiblemente sea alóctona.
6. Aphis fabae solanella es considerada como especie por muchos autores; mantenemos aquí el criterio de Remaudière & Remaudière,1997.
7. A juzgar por las características de sus respectivos tipos, Aphis mulini y Aphis mulinicola son especies muy semejantes, aunque no es posible asegurar que sean sinónimas sin el estudio de un mayor número de ejemplares.
8. La identidad y extraordinaria variabilidad de Aphis patagonica ha quedado completamente establecida por Remaudière, 1994 y por Ortego & Mier Durante,1997.
9. Mier Durante et al. (2003) han establecido el neotipo de Aphis senecionicoides.
10. Pehunchaphis americana fue descrita (Mier Durante & Ortego, 1998) en combinación con Seneciobium y transferida después (Mier Durante et al., 2003) a Pehuenchaphis al describirse este género y su especie tipo P. agilissima.
11. Seguimos en este caso el criterio de Eastop, 1979 y Kadyrbekov, 2001, quienes dan a Protaphis el rango de género, extrayéndolo de Aphis.
12. Con posterioridad a su primera mención argentina para la provincia de Santa Fe, Melanaphis bambusae se ha recogido sobre una especie no identificada de bambú en La Plata (Buenos Aires), 5-XI-2002 (Ricci leg.).
13. Macrosiphum bosqi E. E. Blanchard, 1932 era considerada (Remaudière & Remaudière, 1997) sinónimo de Acyrthosiphon malvae (y por lo tanto de A. malvae malvae), aunque se mantenían algunas dudas sobre ello a causa de las plantas huéspedes citadas por el autor. Con el fin de aclarar la situación nomenclatural de ese taxón, Seco et al., 2000 fijaron su lectotipo, pudiendo establecerse ya con seguridad la mencionada sinonimia.
14. Nieto Nafría et. al., 1994 mantuvieron con dudas la combinación original de esta especie; Macrosiphum capitophoroides E. E. Blanchard. Ortego et al. ; 1997 establecieron la combinación Blanchardia capitophoroides al describirse Blanchardia y Blanchardia poikila. Por otra parte Blanchardaphis ha sustituído a Blanchardia, que resultó estar preocupado (Ortego et. al., 1998).
15. En la clasificación del género Brachycaudus seguimos el criterio de Andreev (2004).
16. Capitophorus hippophaes se cita por vez primera para Chile: Talca (Región VII), 15-V-2002, sobre Polygonum persicaria, hembras vivíparas ápteras y aladas.
17. En la bibliografía (ver por ejemplo: Eastop & Hille Ris Lambers, 1976 o Nieto Nafría et al., 1994) Diuraphis noxia es atribuida equivocadamente a Mordvilko (Remaudière & Remaudière, 1997). Por otra parte Nieto Nafría et al., 1994, recogieron la cita de Ortego & Delfino, 1994, que no se hizo constar en la bibliografía.
18. Nieto Nafría et al., 1994 consideraron que la cita de M. festucae dada por Remaudière, 1963, correspondía a la subespecie M. f. cerealium, pero Remaudière et al., 1992 habían señalado inequívocamente que esa cita correspondía a la subespecie nominotípica.
19. Seguimos aquí el criterio de Remaudière & Remaudière, 1997 subordinando Picturaphis a Microparsus ; Nieto Nafría et al., 1994 siguieron el criterio de considerarlos géneros separados.
20. Carvalho et al., 1998 establecieron la sinonimia entre U. bereticum y otras dos especies del género, descritas por Blanchard, 1932: U. cocoense y U. cordobense.
21. Carvalho et al., 1998 dan a Macrosiphum lizerianum de Blanchard, 1922 (considerado ya en combinación con Uroleucon por Eastop & Hille Ris Lambers, 1976, Remaudière & Remaudière, 1997 y Nieto Nafría et al., 1994) el tratamiento de variedad de Uroleucon ambrosiae. Estamos de acuerdo con dichos autores en que existen caracteres de diferenciación entre U. ambrosiae y U. lizerianum, los cuales no son lo suficientemente importantes como para asignar a ambos taxones el rango de especie. Pero no estamos de acuerdo con ellos en asignar a U. lizerianum la calidad de variedad, no admitida por el Código Internacional de Nomenclatura Zoológica, 2000.
22. Carvalho et al., 1998 establecieron la sinonimia entre esta especie y U. griersoni (E.E. Blanchard).
23. Ortego, 1994 daba a conocer la presencia de W. nervata en la Argentina (para la provincia de Mendoza) al tiempo que lo hacían Nieto Nafría et al., 1994 (para la provincia de Córdoba).
24. Se cita por primera vez para Chile, recolectada en San Fernando, provincia de Rancagua, Región VI (15-XII-2003, sobre un bambú no identificado, Ortego leg.). La primera cita argentina de Takecallis arundinariae procede de la provincia de Córdoba (Delfino, 2001); se ha capturado también en Mendoza (Ciudad, 13-V-2002, sobre Arundinaria sp., Ortego leg.) y en Buenos Aires (La Plata, 5-XI-2002 sobre un bambú no identificado, Ricci leg.).
25. Con posterioridad a la cita de Delfino, 2001, T. taiwana fue citado por Saini et al., 2002. La especie también fue recolectada por J. Ortego en Mendoza (Capital y Maipú, 26-V-2002, sobre bambúes no identificados).
26. En la subdivisión de los géneros Therioaphis y Tinocallis seguimos lo establecido por Quednau, 2003.
27. Con posterioridad a su primera mención argentina (Ortego, et al., 2000), para Mendoza, Chaitophorus leucomelas fue mencionada (Delfino et al., 2002) para Río Negro y Neuquén. J. Ortego la recolectó también en Río Negro: General Roca, 30-X-2001, y en Chile: Arica (Región I), 14-XII-2000, en ambos casos sobre Populus nigra.
28. Remaudière & Remaudière, 1997 mantienen la duda sobre la sinonimia entre P. populitransversus, P. canadensis Del Guercio y P. solanophila (E.E. Blanchard) ya comentada por Nieto Nafría, et al., 1994.
29. Según Blackman & Eastop, 1995 Cinarapiceae (Panzer) no se encontraría en la Argentina, porque Blanchard, 1939 que la citó bajo el nombre C. grossus Kaltenbach, se basó en una identificación incorrecta de C. confinis (Koch); pero Delfino & Binazzi, 2002 la han citado de nuevo a partir de material recientemente recolectado.
30. Cinara pinimaritimae (Dufour) es el nombre correcto para Cinara maritimae Eastop & Hille Ris Lambers (no Dufour), como han explicado Nieto Nafría et al., 2003a.
Especies Introducidas – Especies Nativas
De las 200 especies registradas en el territorio continental de la Argentina, 49 (el 24,5%) son nativas de Sudamérica, mientras que 151 (75,5%) son introducidas. Nieto Nafría et al., 1994 habían señalado que las especies autóctonas significaban el 22,6% del total y las alóctonas el 77,4%. Como se puede apreciar, la cantidad relativa de especies introducidas ha descendido en relación al importante número de especies descritas con material argentino en los últimos años (22 de las 25 especies autóctonas incorporadas al catálogo), a pesar que en los últimos 10 años se han citado por primera vez para la Argentina otras 44 especies alóctonas.
El género Aphis Linnaeus es el género con mayor número total de especies (33) y también de especies autóctonas (20, el 60,6% de las del género). El segundo género en importancia de acuerdo a ambos criterios es Uroleucon Mordvilko (12 especies en total y 7 autóctonas, el 58,3%). El tercero en número de especies es Cinara Curtis (11 especies) pero todas ellas son introducidas.
Los otros géneros autóctonos o con grupos de especies autóctonas (Neuquenaphis E. E. Blanchard, Lizerius E.E. Blanchard, Andinaphis (Mier Durante, Ortego & Nieto Nafría), Blanchardaphis (Ortego, Nieto Nafría & Mier Durante), Brachyunguis B. Das, Microparsus Patch, Nietonafriella Ortego, Pehuenchaphis Mier Durante, Nieto Nafría & Ortego, Pentamyzus Hille Ris Lambers y Wahlgreniella Hille Ris Lambers) no parecen tener una diversificación tan notable como la de Uroleucon ni, mucho menos, como la de Aphis.
AGRADECIMIENTOS
A M. Ricci (Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad Nacional de La Plata) e I. Bertolaccini (Facultad de Agronomía y Veterinaria, Universidad Nacional del Litoral), por el material que nos enviaron para identificar; a F.W. Quednau (Natural Resources Canada, Laurentian Forestry Centre; Sainte-Foy, Quebec, Canadá) y a A. Andreev (Academy of Sciences of Moldova, Institut of Zoology; Kishinev, Moldavia), por la información sobre la taxonomía de los géneros Therioaphis, Tinocallis y Brachycaudus ; y a A. Dalmaso y E. Martínez (IADIZA, Mendoza), por su contribución en la identificación de los vegetales. A J. M. Nieto Nafría (Universidad de León) por sus consejos y lectura crítica del manuscrito. Este trabajo ha sido realizado en parte con aportes de los proyectos de investigación LE-20/99 y LE-45/02 de la Junta de Castilla y León, Consejería de Educación y Cultura, España.
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Recibido: 8-IX-2003
Aceptado: 10-I-2004